Caracterização seminal de carás (Geophagus brasiliensis - Cichlidae) induzidos artificialmente

Andréa Ferretto Rocha; Abdel Correia  Handem; Mario Luiz Biazzetti  Filho; Marcia Regina  Stech; Mario Roberto Chim   Figueiredo

doi:10.36812/pag.2019253104-118

Andréa Ferretto Rocha Secretaria de Agricultura, Pecuária e Desenvolvimento Rural do RS https://orcid.org/0000-0002-0445-1277
Abdel Correia Handem Secretaria de Agricultura, Pecuária e Desenvolvimento Rural do RS https://orcid.org/0000-0003-4586-5764
Mario Luiz Biazzetti Filho Universidade Federal do Rio Grande do Sul
Marcia Regina Stech Secretaria de Agricultura, Pecuária e Desenvolvimento Rural do RS https://orcid.org/0000-0002-5652-0406
Mario Roberto Chim Figueiredo Universidade Federal do Rio Grande (FURG) https://orcid.org/0000-0001-9338-117X

DOI: https://doi.org/10.36812/pag.2019253104-118

Palavras-chave: Aquicultura, Peixe nativo, Reprodução induzida

Resumo

Um estudo foi realizado com o objetivo de avaliar as características seminais do cará Geophagus brasiliensis mantido em cativeiro com e sem indução hormonal. Para tanto, foram utilizados 26 machos distribuídos entre os seguintes tratamentos: nove machos sem indução hormonal; nove machos com indução hormonal de extrato de hipófise de carpa (HC) e oito machos com indução hormonal por gonadotropina coriônica humana (HCG). Os parâmetros avaliados para a caracterização seminal nos diferentes tratamentos foram volume seminal, cor do sêmen, motilidade espermática, vigor espermático, tempo de latência, concentração espermática e viabilidade espermática. Os dados foram submetidos à análise de variância com 95% de confiança. A coloração do sêmen foi classificada como branco leitoso. Os valores médios para a motilidade, vigor espermático e concentrações dos espermatozoides foram: 94,44%, 78,75% e 63,88%; 4,44, 4,00 e 3,55; 5,10, 5,00 e 5,72 x 10⁹ mL^-1, para os tratamentos sem indução, HCG e HC, respectivamente. O tempo de latência espermático variou de 143,4 a 988,2 segundos e a viabilidade espermática foi de 100% para todos os tratamentos. A análise de variância não apresentou diferença significativa entre os efeitos dos diferentes tratamentos sobre nenhum dos parâmetros avaliados. Embora os resultados tenham demonstrado não ser necessária a indução artificial de machos durante o período reprodutivo, outros protocolos de reprodução artificial devem ser testados para G. brasiliensis vislumbrando o uso da espécie de forma comercial na aquicultura.

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Referências

AMARAL JÚNIOR, H.; NETTO, J. A.; GARCIA, S.; MELLO, G. L. Pesquisa de comparação entre a taxa de crescimento do Acará Geophagus brasiliensis e a Tilápia Oreochromis niloticus em condições de monocultivo intensivo utilizando ração e alimento vivo. Revista Electrónica de Veterinária, v. 12, n. 9, p. 1–22, 2011.

AMORIM, V. M. C. Criopreservação do sêmen de tilápia nilótica (Oreochromis niloticus), variedade chitralada. Belo Horizonte, Minas Gerais: PUC, 2002. 64p. Dissertação (Mestrado em Zoologia) - Programa de Pós-graduação em Zoologia de Vertebrados, Pontifícia Universidade Católica.

ANDRADE, D.R.; YASUI, G.S. Manejo da reprodução natural e artificial e sua importância na produção de peixes no Brasil. Revista Brasileira de Reprodução Animal, v. 27, n. 2, p. 166-172, 2003.

BARBIERI. M. C.; BARBIERI, G.; MARINS, M. A. Sobre a anatomia e histologia de testículo de Geophagus brasiliensis na reprêsa do Lobo, São Paulo. Revista Brasileira de Biologia, v. 41, n. 1, p. 169-73, 1981.

BUCKUP, P. A.; REIS, R. Conheça nossos peixes. Natureza em revista 1985; 10: 22-29. In: SANTOS, G. O, FONTOURA, N. P. Dinâmica Reprodutiva de Geophagus brasiliensis (QUOY & GAIMARD, 1824), no açude Águas Belas, Viamão, Rio Grande do Sul. (TELEOSTEI — CICHLIDAE). Pesquisa Agropecuária Gaúcha - Seção: Recursos Naturais Renováveis, v. 6, n. 1, p. 131-44, 2000.

CALDAS, J. S. Dimetil sulfóxido, Etileno glicol e Glicerol na criopreservação seminal de Geophagus brasiliensis. Rio Grande, Rio Grande do Sul: FURG, 2014. 51 p. Dissertação (Mestrado em Biologia de Ambientes Aquáticos Continentais) - Programa de Pós-graduação em Biologia de Ambientes Aquáticos Continentais, Instituto de Ciências Biológicas, Universidade Federal do Rio Grande.

CARNEIRO, P. C. F.; MIKOS, J. D. Gonadotrofina coriônica humana e hormônio liberador de gonadotrofina como indutores da reprodução do jundiá. Acta Scientiarum Biological Sciences, v. 30, n. 3, p. 345–350, 2008. DOI: https://doi.org/10.4025/actascianimsci.v30i3.929

CBRA - COLÉGIO BRASILEIRO DE REPRODUÇÃO ANIMAL. Manual para exame andrológico e avaliação de sêmen animal. 2ª ed. Belo Horizonte. 1998. 49 p. doi: https://doi.org/10.36812/pag.2019253104-118

CEJKO, B. I.; TARGON´SKA, K.; KOWALSKI, R. K.; ŻARSKI, D.; SAROSIEK, B.; KUCHARCZYK, D.; GLOGOWSKI, J. The effectiveness of hormonal preparations (Ovopel, Ovaprim, LHRHa, hCG and CPE) in stimulating spermiation in dace Leuciscus leuciscus (L.). Journal of Applied Ichthyology, v. 28, p. 873–877, 2012. DOI: https://doi.org/10.1111/jai.12054

GARCÍA-ALONSO, J.; VIZZIANO, D. Induction of oocyte maturation in the white croaker Micropogonias furnieri (Pisces: Sciaenidae) by human chorionic gonadotropin. Brazilian Journal of Biology, v. 64, p. 73-80, 2004. DOI: https://doi.org/10.1590/S1519-69842004000100009

GODINHO, H. P.; AMORIM, V. M. C.; PEIXOTO, M. T. D. Criopreservação do Sêmen de Tilápia-Nilótica Oreochromis niloticus, var. Chitralada: Crioprotetores, Soluções Ativadoras e Refrigerador Criogênico. Revista Brasileira de Zootecnia, v. 32, n. 6, p. 1537-1543, 2003. DOI: https://doi.org/10.1590/S1516-35982003000700001

KRÓL, J.; KOWALSKI, R. K., HLIWA, P.; DIETRICH, G.; STABINSKI, R.; CIRIEZKO, A. The effects of commercial preparations containing two different GnRH analogues and dopamine antagonists on spermation and sperm characteristics in the European smelt Osmerus eperlanus (L.). Aquaculture, v. 286, p. 328–331, 2009. DOI: https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2008.09.034

LEONHARDT, J. H. Efeito da reversão sexual em tilápia do Nilo, Oreochromis niloticus (Linnaeus, 1757). Jaboticabal, São Paulo: UNESP, 1997. 141 p. Tese (Doutorado em Aquicultura) - Programa de Pós-graduação em Aquicultura, Centro de Aqüicultura da Universidade Estadual Paulista.

LOPERA-BARRERO N. M.; ALVAREZ, C. A. R.; RODRIGUEZ-RODRIGUEZ, M. P; POVH, J. A.; VARGAS, L.; STREIT JÚNIOR, D. P.; SIROL, R. N.; RIBEIRO, R. P. Diversidade genética e paternidade de progênies de Brycon orbignyanus obtidas por diferentes sistemas reprodutivos. Semina: Ciências Agrárias, v. 35, p. 541-554, 2014. DOI: https://doi.org/10.5433/1679-0359.2014v35n1p541

MALABARBA, L. R.; NETO, P. C.; BERTACO, V. A.; CARVALHO, T. P.; SANTOS, J. F.; ARTIOLI, L. G. S. Guia de identificação dos peixes da bacia do rio Tramandaí. Porto Alegre: Editora Via Sapiens, 2013. 140 p. doi: https://doi.org/10.36812/pag.2019253104-118

MARDINI, C. V. Desova em confinamento do cará manteiga, Geophagus brasiliensis e comentários sobre a espécie. Porto Alegre: Departamento de Pesca, Secretaria da Agricultura do RS, 1983, 8 p. In: SANTOS, G. O.; FONTOURA, N. P. Dinâmica Reprodutiva de Geophagus brasiliensis (QUOY & GAIMARD, 1824), no açude Águas Belas, Viamão, Rio Grande do Sul. (TELEOSTEI — CICHLIDAE). Pesquisa Agropecuária Gaúcha - Seção: Recursos Naturais Renováveis, v. 6, n. 1, p. 131-144, 2000.

MARIA, A. N.; AZEVEDO, H. C.; SANTOS, J. P.; CARNEIRO, P. C. F. Hormonal induction and semen characteristics of tambaqui Colossoma macropomum. Zigote, v. 5, p.1–5, 2011. DOI: https://doi.org/10.1017/S0967199410000559

MATAVELI, M.; MORAES, G. V; STREIT Jr., D. P.; MENDEZ, L. D. V.; SAKAGUTI, E. S.; TONINATO, J. C.; BARBOSA, R. C.; MERLINI, L. Avaliação da qualidade do sêmen de Tilápia-do- Nilo (Oreochromis niloticus), Linhagem chitralada, suplementada com diferentes concentrações de vitamina C. Boletim do Instituto de Pesca, v. 33, n. 1, p. 1–7, 2007.

MOJICA, C. A. P. Análise ultraestrutural e avaliação do sêmen de peixes neotropicais, Brycon orbignyanus, Rhamdia quelen e Brycon hilarii (Pisces, Teleostei). Campus de Jaboticabal, São Paulo: UNESP, 2004. 82 p. Dissertação (Mestrado em Aquicultura) - Programa de Pós-graduação em Aquicultura, Centro de Aqüicultura da Universidade Estadual Paulista.

MYLONAS, C. C.; FOSTIER, A.; ZANUY, S. Broodstock management and hormonal manipulations of fish reproduction. General and Comparative Endocrinology, v. 165, p. 516–534, 2010. DOI: https://doi.org/10.1016/j.ygcen.2009.03.007

NASCIMENTO, A. F.; MARIA, A. N.; PESSOA, N. O.; CARVALHO, M. A. M.; VIVEIROS, A. T. M. Out-of-season sperm cryopreserved in different freezing media of the Amazonian freshwater fish pirapitinga (Piaractus brachypomus). Animal Reproduction Science, v. 118, n. 2, p. 324-29, 2010. DOI: https://doi.org/10.1016/j.anireprosci.2009.07.002

ORFÃO, L. H. Indução da desova e espermiação de peixes em criações comerciais. Revista Brasileira de Reprodução Animal, v. 37, n. 2, p. 192-195, 2013.

ORTIZ, R. J. Características espermáticas na subfamília Cichlinae (Perciformes: Cichlidae) e suas implicações filogenéticas. Campus de Botucatu, São Paulo: UNESP, 2012. 77 p. Tese (Doutorado em Biologia Geral e Aplicada) - Instituto de Biociências, Universidade Estadual Paulista. doi: https://doi.org/10.36812/pag.2019253104-118 DOI: https://doi.org/10.36812/pag.2019253104-118

PEREIRA, P. N. B.; DA SILVA, A. C.; TEIXEIRA, E. G.; FARIAS, W. R. L. Efeito do anestésico eugenol na qualidade espermática do sêmen de tilápia do Nilo (Oreochromis niloticus). Revista Brasileira de Higiene e Sanidade Animal, v. 10, n. 3, p. 415 – 435, 2016. DOI: https://doi.org/10.5935/1981-2965.20160034

ROCHA, V. M. Caracterização do sêmen de neomachos de Rhamdia quelen. Florianópolis: UFSC, 2017. 80 p. Dissertação (Mestrado em Aquicultura). Programa de Pós-Graduação em Aquicultura, Universidade Federal de Santa Catarina.

RURANGWA, E.; KIME, D. E.; OLLEVIER, F.; NASH, J. P. The measurement of sperm motility and factors affecting sperm quality in cultured fish. Aquaculture, v. 234, p. 1–28, 2004. DOI: https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2003.12.006

SADIQUL ISLAM, M.; AKHTER, T. Tale of Fish Sperm and Factors Affecting Sperm Motility: A Review. Advances in Life Sciences, v. 1, n. 1, p. 11-19, 2011. DOI: https://doi.org/10.5923/j.als.20110101.03

SANCHES, E. A.; BAGGIO, D. M.; PIANA, P. A.; SOUZA, B. E.; BOMBARDELLI, R. A. Artificial fertilization of oocytes and sperm activation in pacu: effects of the spermatozoa: oocyte ratio, water volume, and in natura semen preservation. Revista Brasileira de Zootecnia, v. 40, n. 1, p. 1-6, 2011. DOI: https://doi.org/10.1590/S1516-35982011000100001

SANTOS, G. O.; FONTOURA, N. F. Dinâmica reprodutiva de G. brasiliensis (Quoy & Gaimard, 1824), no açude Águas Belas, Viamão, Rio Grande do Sul. (Teleostei - Cichlidae). Pesquisa de Agropecuária Gaúcha, v. 6, n. 1, p. 131–144, 2000.

SOKAL, R. R.; ROHLF, F. J. Biometry: The Principles and Practice of Statistics in Biological Research. 3rd. ed. New York: W.H. Freeman, 1995. 887 p.

STREIT JR., D. P.; OLIVEIRA, A. C.; RIBEIRO, R. P.; SIROL, R. N.; MORAES, G. V.; GALO, J. M.; DIGMAYER, M. Motilidade, vigor e patologias seminal in natura e pós-criopreservação de Piaractus mesopotamicus. Boletim do Instituto de Pesca, São Paulo, v. 35, n. 2, p. 159–167, 2009.

VIVEIROS, A. T. M.; GODINHO, H. P. Sperm quality and cryopreservation of Brazilian freshwater fish species: a review. Fish Physiology Biochemistry, v. 35, p. 137–150, 2009. doi: https://doi.org/10.36812/pag.2019253104-118 DOI: https://doi.org/10.1007/s10695-008-9240-3

VIVEIROS, A. T. M.; NASCIMENTO, A. F.; ORFÃO, L. H.; ISAÚ, Z. A. Motility and fertility of the subtropical freshwater fish streaked prochilod (Prochilodus lineatus) sperm cryopreserved in powdered coconut water. Theriogenology, v. 74, n. 40, p. 551-56, 2010. DOI: https://doi.org/10.1016/j.theriogenology.2010.03.018

ZANIBONI FILHO, E. ; WEINGARTNER, M. Técnicas de indução da reprodução de peixes migradores. Revista Brasileira Reprodução Animal, v. 31, p. 367–373, 2007.